Какая у собаке сперма

Автор: Горшенина Д. Ф. к.в.н., ВЦ «Солнышко», г. Казань.

В настоящее время в связи с повышением требований к качеству и количеству потомства у высокопородных животных, в частности собак, большим спросом пользуется диагностика качества кобелей-производителей.
Для диагностики репродуктивной функции кобелей необходимо изучить в первую очередь наличие или отсутствие инфекций половых путей, которые влияют на процесс сперматогенеза, а также провести диагностику всех фракций эякулята. Кроме того, для заключения по качеству кобеля-производителя необходимо знать качество полученного потомства: только заключения по качеству спермы недостаточно.

План обследования кобеля:
1. анамнез, осмотр;
2. диагностика на урогенитальные инфекции;
3. исследование эякулята.

Анамнез и осмотр

У хозяина необходимо выяснить возраст кобеля, количество вязок и количество продуктивных вязок. Имеет значение количество щенков в помете, их здоровье и качество (породные пороки, пороки развития и окраса).
После сбора анамнеза необходимо провести тщательный осмотр производителя. В первую очередь это касается репродуктивных органов. Произошло ли опущение семенников в мошонку, плотность, болезненность, атрофия или гипертрофия яичек.
Большое значение имеет упитанность кобеля: при ожирении нарушается температурный баланс в яичках и, как следствие, происходит нарушение сперматогенеза. Истощение, наоборот, как правило опосредованно свидетельствует о нарушении обмена жирорастворимых витаминов, в первую очередь витаминов Д и Е, что также нарушает процесс выработки и созревания сперматозоидов.
Осмотр полового члена и препуция необходим для выявления возможных травм, деформаций, стриктур уретры, наличия фимоза и парафимоза. Данные патологии не влияют на качество спермы, но нарушают сам процесс оплодотворения, делая его болезненным или невозможным.
Диагностика простаты включает в себя ректальное исследование, при необходимости – УЗИ-диагностику. Хотя проблемы простаты и не влияют на процесс сперматогенеза, они могут вызвать нарушения процесса оплодотворения – болезненные садки, малое количество промывающей и проталкивающей фракции спермы, бактериальные инфекции могут вызвать проблемы с оплодотворением и вынашиванием плодов. Специальные исследования состоят из микроскопии третьей фракции эякулята и ее бактериологического посева с подтитровкой антибиотиков. При необходимости проводится биопсия.

Диагностика урогенитальных инфекций

Бактериальные инфекции диагностируются при микроскопии и бактериологическом посеве смегмы и эякулята. Большое количество смегмы – вариант нормы, в ней может присутствовать множество лимфоцитов и условно патогенных бактерий. Поэтому патологической смегма считается только при обнаружении в бакпосеве патогенных и устойчивых бактерий. На сегодняшний момент единственным известным патогеном является Brucella canis.
Из инфекций, имеющих значение в урологии и гинекологии, наиболее значимыми являются токсоплазмоз, бруцеллез, герпес и уреаплазмоз. В меньшей степени – микоплазмоз и хламидиоз (по последним данным – Сятковская, 2013 – хламидиоз у собак никогда не вызывает проблем репродуктивной системы).
В нашей практике наиболее часто используются серологические методы диагностики – ИФА и ИХГ. Отличие состоит в том, что при ИФА-диагностике определяется уровень антител в сыворотке крови (следует иметь в виду, что наличие антител к инфекциям не всегда говорит о наличии самой инфекции, возможно носительство поствакцинальных антител или переболевание и самовыздоровление), а при ИХГ определяется наличие антигена (минусом является низкая чувствительность тестов и возможность ложноположительных и ложноотрицательных результатов).

Исследование эякулята

Для стимуляции и ускорения процесса забора семени применяют два основных метода – присутствие течной суки (не всегда возможно) и применение ватки, смоченной вагинальными выделениями течной суки (можно хранить в хорошо закрытой посуде в замороженном виде, перед применением необходимо разогреть).
Забор семени у мелких кобелей проводится на столе, у крупных – на полу (фото 1).

Сначала необходимо вызвать первичную эрекцию, для этого производят движения крайней плотью вперед-назад, плотно, но не сильно обхватывая ее ладонью. Затем сдвигают крайнюю плоть назад для освобождения пениса. После набухания бульбус гландис зажимают или ритмично сдавливают основание пениса большим и указательным пальцами. Для ускорения процедуры забора жидкости можно свободной рукой производить одновременное нажатие на простату ректально.

Для исследования необходимо отдельно собрать все три фракции эякулята:

Простатическая жидкость.
0,5-2 мл. Вырабатывается простатой. Содержит много поверхностных эпителиальных клеток, возможно наличие бактерий и мочевых солей, т.к. она промывает уретру. Выделяется самой первой во время активных движений кобеля. Должна быть прозрачной.
Спермосодержащая фракция.
0,5-1 мл. Вырабатывается семявыносящими протоками. Содержит большое количество спермиев, незначительное количество лейкоцитов и не содержит бактерий. Белого цвета. Выделяется при сокращении уретры. Кобель в этот момент, как правило, не двигается. После забора фракцию необходимо немедленно установить на подогреваемую поставку (t 35-38ºС)
Простатическая жидкость.
до 20 мл. Вырабатывается простатой. Наиболее значима для диагностики заболеваний простаты. Длительный контакт со спермиями вызывает снижение их активности. Прозрачная. При воспалительных процессах простаты содержит большое количество лейкоцитов, эпителиальных клеток и небольшое количество спермиев (фото 2).

Исследование качества спермы

Объем эякулята определяется с помощью градуированной пробирки.
Концентрация сперматозоидов (количество) подсчитывается в камере Нейбауэра или камере Фукса-Розенталя с предварительным разведением второй фракции 1:200 дистиллированной водой. Нормальное значение концентрации сперматозоидов колеблется в пределах 300-800 млн в 1 мл. Общее количество сперматозоидов за эякуляцию определяется путем умножения концентрации сперматозоидов на объем второй фракции эякулята. Нормальное значение для здоровых собак составляет 300-1000 млн сперматозоидов за эякуляцию.
Активность спермиев определяется на основании процента подвижности и качества их движения. Оценка производится на теплом предметном стекле микроскопа при увеличении ×100 или ×400 (фото 3). Нормальным считается, если более 80% (в идеале 90%) сперматозоидов имеют активное поступательное движение (быстро движутся вперед). При преобладании колебательных или круговых движений необходимо проверить температуру предметного стекла и при необходимости нагреть его до t 35-38ºС.
Оценка морфологии сперматозоидов проводится после изготовления мазка и окраски методом дифф-квик или лейкодиф (можно красителем эозин-нигрозин). Нормой считается наличие более 80% морфологически нормальных сперматозоидов. Патологические формы спермиев могут быть связаны с патологией развития (первичные и вторичные аномалии) и с деформацией при заборе и исследовании пробы (третичные аномалии). При обнаружении более 30% первичных и вторичных аномалий необходимо рассмотреть вопрос об исключении кобеля из воспроизводства. Однако следует учитывать, что процесс сперматогенеза и выведения готовых сперматозоидов длительный и занимает около 8 недель, поэтому если в анамнезе присутствуют травмы мошонки, гипертермия или гормональные сбои (гипоталамус, гипофиз или щитовидная железа), с момента которых прошло менее 8 недель, то следует провести повторные исследования через 2 месяца.
К патологиям развития спермиев относятся: аномалии головки (дублирование, проксимальные цитоплазматические капли, шишки, кратеры), аномалии шейки (гнутая шейка, проксимальная цитоплазматическая капля) и аномалии хвостика (дублирование, согнутый хвостик, свернутый хвостик и т.д.) (рис. 1).
Следует иметь в виду, что сперматогенез происходит в семенных канальцах яичек. К необходимым условиям правильного сперматогенеза относятся:

отсутствие патологии развития или травмы половых органов;
возраст кобеля (сперматогенез начинается с 4 месяцев, но в эякуляте зрелые сперматозоиды появляются только в возрасте 10-12 месяцев);
отсутствие половых инфекций (бактериальные инфекции, вирус герпеса и др.);
температурный контроль (поддерживается за счет расположения семенников, сосудов и работы мышц, регулирующих расположение мошонки по отношению к телу);
правильная работа желез внутренней секреции (ЖВС) – гипоталамуса и гипофиза, яичек. Гормоны (рилизинг-гормон, андрогены, лютеинизирующий и фолликулостимулирующий гормоны) осуществляют контроль сперматогенеза по принципу обратной связи.

В противоположность существующему мнению большинства ветеринарных врачей работа и заболевания предстательной железы абсолютно не влияют на процесс сперматогенеза. Простата вырабатывает только первую и третью фракцию эякулята и участвует лишь в процессе продвижения сперматозоидов по уретре кобеля и во влагалище суки. Кроме того, по данным G.C.W. England (1998), секрет простаты скорее угнетает сперматогенез, чем поддерживает его.
При обнаружении снижения фертильности за счет уменьшения количества и активности сперматозоидов более чем на 50%, а также обнаружения более 30% аномальных спермиев (первичные и вторичные аномалии) необходимо исключить возможные причины нарушения сперматогенеза или применить анаболические стероиды с контролем исследования спермы через 2-3 месяца. При сохранении данных патологий рекомендуется исключить кобеля из процесса воспроизводства.

Автор:
Горшенина Д. Ф.

Рубрика:
Терапия

Источник

Оценка спермы по цвету, запаху, консистенции и объему.

Каждый полученный эякцулят немедленно исследуют по цвету, запаху, консистенции и объему. Такую оценку называют еще макроскопической, органолептической, глазомерной или ветеринарно-санитарной. Это первый этап исследования свежеполученной спермы.

Цвет, консистенцию, запах спермы, а также отсутствие или наличие в сперме посторонних примесей определяют по эякуляту непосредственно в спермоприемнике.

Присутствие в сперме частиц фекалий, земли, грязи, подстилки и тому подобное указывает об антисанитарных условиях содержания производителя и не выполнении правил получения спермы.

Не выливая полученный эякулят из спермоприемника, устанавливают наличие в сперме гноя (желтые или бурые сгустки), крови, мочи, сгустков. Непрофильтрованная сперма жеребца имеет примеси слизистого секрета пузырьковидных желез, а сперма хряка – клейкие зерна секрета луковичных желез.

Цвет спермы определяют визуально при хорошем освещении в спермоприемнике, при измерении объема, переливании или фильтрации.

Цвет и консистенция спермы характерны для каждого вида животных и зависит от насыщения ее спермиями.

В норме сперма барана однородная, желтоватая, белая с желтоватым оттенком или желтовато-коричневая, сметанообразной консистенции.

У быка сперма чаще белая, молочно-белая, бело-желтоватая, менее густая по консистенции, чем сперма барана.

Сперма жеребца и хряка серовато-белая, светло-серая, молочного цвета с сероватым оттенком (напоминает цвет молока, сильно разведенного водой).

У птицы сперма молочно-белая с желтоватым оттенком.

Ярко-красный цвет спермы указывает на примеси крови в результате свежих травм половых органов, темно-красный цвет приобретает сперма при травмах давнего происхождения.

Примеси мочи придают сперме интенсивный желтый цвет.

Зеленоватый цвет с гнилостным запахом и белыми хлопьями возникает при воспалении придаточных половых желез и реже при поражении семенников.

Консистенцию спермы определяют при переливании и фильтрации спермы, а также перемещением ее круговыми движениями в спермоприемнике. Она зависит, главным образом, от насыщения спермы спермиями.

У барана нормальная сперма сметанообразной консистенции; у быка – напоминает консистенцию молока; у хряка и жеребца – напоминает консистенцию молока разведенного водой, она водянистая; у птицы сперма сливкообразной консистенции.

Запах спермы устанавливают движением воздуха рукой от емкости со спермой при открытии крышки спермоприемника и после выливания спермы из спермоприемника.

Сперма здоровых производителей, как правило, не имеет специфического запаха. Только сперма барана может иметь запах жиропота, а сперма быка – запах парного молока.

Неприятный, гнилостный запах спермы указывает на воспалительный процесс половых органов, запах аммиака – на загрязнение мочой и невымытый препуций у хряка.

Таким образом, сперма с посторонними примесями, с измененной консистенцией, запахом и цветом непригодна для использования. Ее бракуют, а производителя подвергают всестороннему клиническому и лабораторному исследованию, проводят соответствующее лечение и не допускают к получению спермы до полного выздоровления.

О патологических процессах в половых органах можно судить по выявлению в сперме при ее микроскопии эритроцитов, трихомонад, а в окрашенных мазках – микробов.

Объем эякулята определяют по делениям градуированого спермоприемника, а если он не градуированый, то сперму переливают в градуируемый смеситель спермы, цилиндр, мензурку, спермоприемник или набирают в шприц для осеменения самок сельскохозяйственных животных. Эту посуду предварительно моют, стерилизуют и подогревают до +30-35° С.

Объем можно определить также путем доливания к сперме определенного количества разбавителя при температуре +30-35° С. Разбавленную таким образом сперму осторожно по стенке переливают в градуированную посуду и устанавливают общий объем, а затем вычитают объем разбавителя и определяют объем эякулята.

Необходимо заметить, что когда для определения объема эякулята к сперме доливают разбавитель, нужно предварительно провести исследование свежеполученной, неразбавленной спермы по густоте и активности спермиев, а также взять пробу спермы для определения ее концентрации и выживаемости (живучести).

Известно, что спермоприемники для быка и барана градуированы и объем полученной спермы определяют без переливания в другую посуду.

Измерительную посуду со спермой сразу же закрывают стерильной крышкой. Это обеспечивает более высокую ее стерильность.

Объем эякулята в одноразовом полиэтиленовом спермоприемнике определяют взвешиванием на точных лабораторных весах типа ВЛК-20, ВЛКТ-500 или Р-2-200, зная стандартную массу спермоприемника. Масса 1 г спермы соответствует 1 мл.

Объем спермы жеребца и хряка определяют после фильтрации густых секретов придаточных половых желез.

Сперму, полученную от жеребца, фильтруют из спермоприемника через сложенную в четыре раза марлевую стерильную салфетку в теплый (+30-35°С) стерильный мерный цилиндр или мензурку и закрывают стеклянной стерильной крышкой.

Густой тягучий слизистый секрет пузырьковидных желез, который остается на марле, учитывают отдельно и потом выбрасывают.

Объем эякулята хряка в прозрачных пластмассовых спермоприемниках с фильтром, вставленным в его горловину, определяют по делениям на стенке спермоприемника.

Если сперму от хряка берут на вагину без фильтра в спермоприемнике, то ее переливают в теплую (+30-35°С) стерильную мерную мензурку, фильтруют через стерильную марлю, на которой остается желеобразный секрет или слизистые зерна (так называемые саговые зерна) луковичных (куперовых) желез. Объем этого секрета определяют отдельно и потом выбрасывают. Он вызывает агглютинацию спермы.

Объем эякулята у разных животных не одинаков, зависит от степени разбавления содержимого придатка семенника секретами придаточных желез.

Бараны, козлы, быки выделяют сперму малого объема, измеряемого в миллилитрах. Жеребцы и хряки выделяют эякуляты, измеряемые десятками, сотнями миллилитров.

Объем эякулята у барана составляет 0,8-2 мл; у быка -3-5 мл, иногда 10 и больше (до 20 мл); у жеребца – 40-120 мл, иногда до 250 мл; у хряка -250-500 мл и до 1,2 л; у птицы 0,2-1,3 мл (табл. 1).

При нарушении динамики половых рефлексов, режима эксплуатации, условий кормления и содержания, заболевании производителя, поражении половых органов может наступить уменьшение объема эякулята ниже минимально допустимого уровня. Такое состояние называют олигосперматизмом.

При глубоких поражениях половых органов, а также при болевых ощущениях в области конечностей, таза, поясницы сперма может не выделяться совсем. Такое явление называют асперматизмом.

Если по внешним признакам свежеполученная сперма не имеет отклонений от нормальных показателей объема, цвета, запаха и консистенции, ее в обязательном порядке на всех станциях и пунктах искусственного осеменения сельскохозяйственных животных оценивают по густоте, активности и консистенции.

Таблица 1 – Показатели визуальной оценки качества спермы сельскохозяйственных животных и птицы

Вид животных	Объем эякулята, мл		Цвет	Запах	Консистенция
Вид животных	в среднем	Колебания	Цвет	Запах	Консистенция
Баран	0,8-2	0,5-3	Желтоватый, белый с желтоватым оттенком, желтовато-коричневый	без запаха, или с запахом жиропота	Однородная, сметанообразная
Бык	3-5	1 -15	Белый молочно-белый, бело-желтоватый	Парного молока или без запаха	Напоминает консистенцию молока
Жеребец	40-120	20-250	Серовато-белый, светло-серый, молочного цвета с сероватым оттенком	Без запаха	Водянистая, напоминает консистенцию молока, разведенного водой
Хряк	250-500	100-1200	Серовато-белый, светло-серый, молочного цвета с сероватым оттенком	Без запаха	Водянистая, напоминает консистенцию молока, разведенного водой
Петух		0,2-0,5	Молочно-белый, желтоватый	Без запаха	Сливкообразная, водянистая
Индюк		0,2-0,4	Молочно-белый, желтоватый	Без запаха	Сливкообразная, водянистая
Гусь		0,1-0,3	Молочно-белый, желтоватый	Без запаха	Сливкообразная, водянистая
Селезень		0,2-0,3	Белый, молочно-белый	Без запаха	Сливкообразная, водянистая

Источник

Самцы псовых имеют бульбусную железу у основания пениса. Пенис иногда выходит из влагалища полового члена во время сексуального возбуждения . Во время коитуса бульбус glandis разбухает и результаты в « галстука » (мужские и женские собаки быть связаны друг с другом). Мышцы влагалища женщины сокращаются, способствуя удержанию.

Во время проникновения пенис собаки не находится в состоянии эрекции и может проникать только у самки, потому что он включает узкую кость, называемую « бакулюм », характерную для большинства плацентарных млекопитающих . Когда самец достигает проникновения, он обычно крепче обнимает самку и глубоко толкает ее. Именно в это время пенис мужчины расширяется, и важно, чтобы выпуклая железа находилась внутри достаточно глубоко, чтобы самка могла захватить ее. В отличие от полового акта человека, при котором мужской пенис обычно становится эрегированным перед тем, как войти в женский пол, при совокуплении у собак самец сначала проникает в самку, после чего происходит набухание полового члена до эрекции, что обычно происходит быстро.

Клыки- самцы – одно из немногих животных, у которых есть запирающаяся бульбусная железа, также известная как «луковица» или «узел», сферическая область эректильной ткани у основания полового члена. Во время совокупления, после того, как пенис мужчины полностью находится во влагалище женщины, бульбусная железа наполняется кровью. Когда влагалище женщины сжимается, пенис оказывается заблокированным внутри женщины. Это известно как «завязывание» или «завязывание узлов». Сообщается , что совокупительная связь, характерная для спаривания у большинства собак , у африканской дикой собаки отсутствует или очень коротка (менее одной минуты) , возможно, из-за обилия крупных хищников в ее среде.

Смотрите также

Размножение собак # Копуляция
Сбор спермы у собак
Мочеиспускание # Canidae
Трансмиссивная венерическая опухоль собак
Репродуктивное поведение собак

Ссылки

дальнейшее чтение

Джонсон Ричард Д., Китчелл Ральф Л. (1987). «Механорецепторный ответ на механические и термические раздражители в головке полового члена собаки». Журнал нейрофизиологии . 57 (6): 1813–1836. DOI : 10,1152 / jn.1987.57.6.1813 .
Карати CJ, Creed KE, Keogh EJ (1988). «Сосудистые изменения при эрекции полового члена у собаки» . Журнал физиологии . 400 (1): 75–88. DOI : 10.1113 / jphysiol.1988.sp017111 . PMC 1191798 .CS1 maint: несколько имен: список авторов ( ссылка )
Hanyu S; и другие. (2010). «Механизм эрекции полового члена у собаки». Urologia Internationalis . 42 (6): 401–412.
Харт Бенджамин Л. (1972). «Действие внешних мышц полового члена во время совокупления у кобеля». Анатомическая запись . 173 (1): 1–5. DOI : 10.1002 / ar.1091730101 .
Харт Бенджамин Л., Китчелл Ральф Л. (1965). «Внешняя морфология эрегированной головки полового члена собаки». Анатомическая запись . 152 (2): 193–198. DOI : 10.1002 / ar.1091520210 .
Куцлер Мишель Энн (2005). «Сбор спермы у собаки». Териогенология . 64 (3): 747–754. DOI : 10.1016 / j.theriogenology.2005.05.023 .
Пурохит Р.С., Беккет Сидни Д. (1976). «Давление на половой член и мышечная активность, связанная с эрекцией и эякуляцией у собак». Американский журнал физиологии. Устаревший контент . 231 (5): 1343–1348. DOI : 10,1152 / ajplegacy.1976.231.5.1343 .
Говард Э. Эванс; Александр де Лахунта (7 августа 2013 г.). Анатомия собаки Миллера . Elsevier Health Sciences. ISBN 978-0-323-26623-9.
Гэри Инглэнд (18 октября 2012 г.). Собаководство, детеныши и уход за щенками . Джон Вили и сыновья. ISBN 978-1-118-41435-4.
Клаус Дитер Будрас (13 сентября 2007 г.). Анатомия собаки . Manson Publishing. ISBN 978-3-89993-099-3. Проверено 21 мая 2013 года .
Георг Мюллер (1911). Болезни собаки и их лечение . Франклин Пресс. п. 207 . Проверено 18 мая 2013 года .
Дуглас Х. Слэттер (2003). Учебник хирургии мелких животных . Elsevier Health Sciences. п. 1535. ISBN 978-0-7216-8607-3. Проверено 18 мая 2013 года .
Бонни В. Бивер (2009). Собачье поведение: идеи и ответы . Elsevier Health Sciences. п. 200. ISBN 978-1-4160-5419-1. Проверено 18 мая 2013 года .
Герстенфельд (1989). Книга по уходу за собаками: все, что вам нужно знать, чтобы ваша собака была здоровой и счастливой . Издательство Эддисон-Уэсли. С. 27 . ISBN 978-0-201-09667-5. Проверено 18 мая 2013 года .
Элизабет Оги; Фредрик Л. Фрай (15 февраля 2001 г.). Сравнительная ветеринарная гистология: с клиническими коррелятами . Manson Publishing. С. 172–. ISBN 978-1-84076-564-9. Проверено 18 мая 2013 года .

Источник